MANEJO DE ANIMALES DE LABORATORIO Y XENODIAGNÓSTICO

SISTEMAS BIOLÓGICOS I

MANEJO DE ANIMALES DE LABORATORIO Y XENODIAGNÓSTICO

INTRODUCCIÓN

            Los animales de experimentación poseen gran importancia para la constante expansión de los conocimientos en las ciencias médicas. Actualmente en todos los campos de la ciencia los animales cumplen su papel tanto a través de la investigación, como para la realización de diversas pruebas de gran utilidad.

            Por ésta y muchas otras razones los animales deben ser empleados siempre dentro de un marco estricto de principios éticos. Éste tema ha recibido mucha atención y actualmente existen programas que estimulan el desarrollo de sistemas in-vitro que sustituyan el uso de animales, sin embargo hay circunstancias en que se hace inevitable su utilización. Cuando es así, las normas éticas obligan al investigador  a causar el menor sufrimiento posible a los animales en experimentación. Tales normas han sido de gran aceptación a nivel de la comunidad científica internacional a tal punto que su aplicación en proyectos de investigación se considera como requisito indispensable para su publicación por las revistas científicas.

            En el área de la microbiología la utilización de los animales es bastante amplia el ejemplo más representativo lo constituye el xenodiagnóstico, que consiste en reproducir la enfermedad en un animal de laboratorio para observar sus manifestaciones clínicas y lesiones anatomopatológicas tanto macro como microscópicamente de los diferentes sistemas. Igualmente se consideran estos sistemas biológicos de gran utilidad para el mantenimiento y recuperación de cepas  de microorganismos, para la obtención de componentes plasmáticos en inmunología tales como anticuerpos, complementos, etc.

OBJETIVOS

1.    Conocer la importancia que tienen los animales de laboratorio en la microbiología

2.    Describir diferentes métodos y técnicas de sujeción para diferentes especies animales.

3.    Practicar los métodos más comunes de inoculación en animales de laboratorio.

MATERIALES

1.    Ratones de laboratorio

2.    Cámaras para mantenimiento de estas especies.

3.    Alimento suficiente para cuatro semanas.

4.    Guantes

5.    Jeringuillas

6.    Agujas calibre 25 a 26

7.    Alcohol yodado

8.    Algodón

PROCEDIMIENTO

1.    Con los dedos pulgar e índice de la mano menos hábil sostener el ratón en la zona de la nuca y el dorso cuidadosamente de forma que la piel quede ligeramente tensada, impidiendo que gire su cabeza.

2.    Vía intraperitoneal

Para la inoculación intraperitoneal se recomienda trabajar con animales en ayuno desde la noche anterior para reducir la posibilidad de una punción visceral.

a.    Colocar el ratón con el abdomen hacia arriba y ligeramente inclinado hacia un costado, para desplaza las vísceras.

b.    Realizar la asepsia

c.    Realizar la punción en el lado contrario

d.    Introduciendo la aguja con un ángulo de 45°

e.    Se pueden inocular volúmenes hasta de 2ml.

3.    Vía intramuscular

a.    Con la ayuda de otro manipulador se extiende sus extremidad posterior

b.    Se realiza la asepsia del área

c.    Se realiza la inoculación en la zona del tercio posterior del muslo

d.    Los volúmenes de inoculación admisibles están entre 0.05 a 0.2ml

4.    Vía intravenosa, se prefieren ratones adultos que hayan alcanzado los 20gr de peso

a.    Es imprescindible utilizar un dispositivo de sujeción en forma de tubo donde el animal quedará completamente inmovilizado.

b.    Se utilizan las venas causales las cuales deben dilatarse previamente introduciendo la extremidad caudal en agua a temperatura entre 50 y 55°C durante un minuto antes de la inoculación.

c.    Introducir la aguja, con el bisel hacia arriba, de forma casi paralela a la arteria.

d.    El embolo no debe ofrecer resistencia para la inoculación, lo contrario indicará que la punción no se ha realizado adecuadamente.

e.    Debe depositarse lentamente el volumen del inóculo.

f.     Se recomienda utilizar volúmenes entre 0.1 a 0.3ml.

5.    Vía Intradérmica

a.    Se realiza en la piel del abdomen, por lo que puede ser necesario rasurar previamente.

b.    Introducir la aguja, con el bisel hacia arriba, de forma casi paralela a la piel, la cual debe tensarse previamente para evitar la formación de arrugas

c.    El volumen máximo para esta especie animal es de 0.05ml

d.    Para evitar pérdida del volumen inoculado se recomienda aguja calibre 27 o menor.

6.    Vía subcutánea

a.    Se realiza levantando la piel e introduciendo la aguja en el espacio entre piel y tegumentos.

b.    Puede realizarse en el área del dorso, cuello, o entre los orejas.

c.    Admite volúmenes mayores.

NOTA: EL PROFESOR REALIZARÁ DEMOSTRACIONES PREVIAS DE TODAS LAS TÉCNICAS.

CONTESTE LAS SIGUIENTES PREGUNTAS

1.    Mencione algunas enfermedades que se diagnostican a través del xenodiagnóstico en nuestro país.

2.    Diga que organizaciones u organismos internacionales regulan la utilización de animales de laboratorio.

3.    Como futuro médico veterinario que papel considera que debe cumplir como profesional en ésta área. Explique

4.    Haga un diagrama donde refleje vías de inoculación de elección, volúmenes de inoculación, calibres de agujas, en las diferentes especies animales.